在试管婴儿的胚胎实验室里，常常有人问到试管推送精子到底是怎么回事。这里的“推送”，本质上是指实验室通过精液优化处理，让活力强的精子主动“游”向培养液上层，或从精浆中分离出来，从而获得用于体外受精的优质精子。精液优化处理是辅助生殖技术中非常重要的环节，其目的是去除精浆、不活动精子、畸形精子、细胞碎片及其他有害物质，制备出含高比例的形态正常的活动精子。

为什么要对精子进行优选处理

男性射精获得的精液中，并非所有精子都适合直接参与受精。实验室优选处理主要解决以下问题：

去除有害成分：精浆中含有前列腺素、炎症细胞、抗精子抗体等不良成分，以及白细胞、细菌等杂质，这些成分需要通过优化处理去除。

筛选活动精子：通过物理方法将活动精子与死精子、白细胞及杂质分开，获得足够数量“优秀”的活动精子。

促进精子获能：在优选过程中，精子同步完成体外获能，改善精子受精能力。

问：试管“推送精子”是手术取精的意思吗？

答：不是。临床上所说的精子的“优选”是精子筛选淘汰和“优选”的过程。而手术取精（如睾丸穿刺、附睾穿刺）是指从男性生殖系统中直接获取精子的过程，两者属于不同环节。

主流的三种精子优选方法

胚胎实验室常用的精子优选方法主要有以下三种，每种方法各有其适用的精液条件：

优选方法	作用原理	适用情况	主要特点
直接上游法	利用活力精子向上游到培养液中的能力，从而将活动精子与死精子、白细胞及杂质分开	精液参数基本正常的标本	能够回收高活动率、存活率、正常形态率的精子；缺点是回收率低
密度梯度离心法	在80%和40%两个非连续密度的梯度液中，由于成熟精子的DNA浓缩后其密度高于80%的梯度液，离心过程中成熟的精子可以通过这层液体到达离心管底部	严重少精子症、畸精子症、弱精子症或冷冻复苏后的精液	能更好地分离精子和其他细胞碎片，回收更多形态正常的精子，并增加精子活力和体外生存能力
直接离心法	用培养液和精液充分混匀后直接离心	精子浓度极低、活力差的精液标本，或附睾及睾丸穿刺得到的精子	尽可能多地回收精子

直接上游法的标准操作步骤是：将1ml液化精液置于试管底部，在液面上方添加1.2ml培养基；或者将1ml精液轻缓加到1.2ml培养基下方，形成液体的分界面；将试管倾斜45°，置37℃孵育60分钟；轻轻将试管恢复直立，将含有高活力精子的最上层1ml培养液转移至另一支试管，加入1.5~2ml培养基稀释；300~500g离心5分钟，弃上清液；加入适量培养液重新混悬精子沉淀备用，并分析精子浓度和活动率。

优选方法的选择依据

精子处理方法的选择取决于精液标本的质量，通常遵循以下原则：

精液参数基本正常：选择直接上游法更好，能够回收高活动率、存活率、正常形态率的精子。

严重少精子症、畸精子症或弱精子症：选择密度梯度法更好，因为可以回收更多的活动精子。

精子浓度极低、活力差：选择直接离心法，尽可能多地回收精子。

联合应用趋势：目前临床上常将密度梯度离心法与上游法结合使用，即先借助密度梯度离心法优选出更多、更好的精子，再利用上游法使其充分获能。

优选后的精子质控与受精

经过优化处理获得的精子悬液，在用于受精前还需要进行评估：

浓度与活动率分析：处理过程（每步时间、操作者等）及处理后的精子密度、活率，应该记录备案并进行分析。

结合受精方式：对于常规IVF（一代试管）而言，优化后的精子将与卵子在培养皿中自由结合；若男方存在严重少弱畸精症等情况，则会改为ICSI（二代试管）方式受精，直接将健康精子注入卵母细胞。

反复离心需谨慎：不管采用何种方法，反复长时间离心可能会导致精子的损伤，处理过程中应记录取精方法、精液的量、颜色、液化情况等基本参数。

精液优化处理是试管婴儿流程中极具技术含量的环节。理解实验室的优选逻辑，有助于准爸爸在取精前更好地配合医嘱，从源头上提升精液质量，为后续的体外受精打下坚实基础。

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